膜的流动性是生物膜结构的基本特征之一，主要指膜脂肪酸链部分及膜蛋白的运动状态。膜脂类分子在相变温度以上条件下主要有侧向扩散、旋转、左右摇摆、伸缩振荡、翻转及异化运动等方式。膜蛋白的运动方式大体分为侧向及旋转运动，主要受脂质双分子层的影响。脂肪酸不饱和键含量和链的长度明显影响着膜脂流动性，不饱和键的存在会降低膜脂分子间排列的有序性，从而增加膜的流动性，短链能减低脂肪酸链尾部相互作用，在相变温度下，不易于凝集，此外，脂肪酸烃链围绕C- C键由全反式构型到歪扭(CAUCHE)的旋转异构运动，也可使流动性加大。
生物膜适宜的流动性是体现生物膜正常功能的必要条件，在一定范围内，膜流动性增加，有利于膜中酶分子的扩散和旋转运动，使酶活性增加。一些载体蛋白分子的运动性也取决于膜中脂类分子的流动性。研究发现肿瘤对化疗药物产生的耐药性主要与细胞膜P糖蛋白过度表达谷胱甘肽及其相关酶系活性改变有关，也有许多研究表明耐药细胞膜流动性较亲代敏感细胞明显增加。另有实验研究发现腹水癌细胞的恶性程度随着膜流动性的增加而增加，白血病及转移的肿瘤细胞的膜流动性远远高于非转移细胞。因此，对敏感及耐药的肿瘤细胞膜流动性的监测有着重要的意义。
膜流动性的测定方法主要有荧光探针标记，电子自旋共振以及差示扫描量热法，x线衍射，棱碰共振等。
贝博® BBcellProbe® TMA-DPH线粒体膜流动性检测试剂盒是利用TMA-DPH测定线粒体膜流动性的荧光探针法，它在脂蛋白及其类似系统的单分子层动力学研究中特别有用。TMA-DPH呈圆柱形，会发生基于按长分子轴线平行排列而产生发射荧光向偶极跃迁，它们对由于周围脂类相互作用而导致的再定位非常敏感。它们广泛地被用于旋转运动研究中的荧光偏振分析。
TMA-DPH本身不发荧光，当与线粒体膜结合后，荧光大大增强，TMA-DPH与可用的线粒体膜表面成比例，其荧光强度对膜表面积的增加敏感。因此，其荧光强度对于导致膜表面积净变化的生理过程敏感，使其成为用于监测诸如线粒体体积和膜变化的事件的优异探针。TMA-DPH荧光偏振测量可与视频显微镜组合，以在大脂质体和单线粒体中提供磷脂顺序的空间分辨图像。
TMA-DPH探针的最大激发波长为355 nm，最大发射波长为430 nm。